A:G6PDH标准溶液的制备
组份D 提取液解冻后置于冰上预冷备用。
将G6PDH标准品(组份E 250mU/μL)用提取液(组份D)稀释100倍为2.5mU/μL的标准液, 在96孔板每孔加入0, 0.5, 1, 2,5, 10μL的标准液, 并用提取液每孔补至50μL体积, 则成为 0 (空白), 1.25, 2.5, 5,12.5, 25mU/孔的标准溶液。
B:样品的准备
细胞和组织样品: 取1×106个细胞或10–100 mg红细胞或10–20 mg剪碎的组织样品用PBS洗涤后,加入200–400μl或等体积的预冷提取液(组份D),置冰上吹打或匀浆,以促进裂解释放G6PDH。随后12,000-15,000g,4ºC 离心10分钟,取上清1-50μL作为待测样品,置冰上备用。
C: 分析反应
1. 配制G6PDH分析液:
根据所需检测的背景对照、标准品和样品的数量,按下表配制适量的G6PDH分析液,并注意现配现用。
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样本空白孔
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样本和标准液孔
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组份A: 分析Buffer
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48μL
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46μL
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组份C: 显色液
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2μL
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2μL
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组份B: G6PDH底物
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-
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2μL
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2. 样本测定
- 取一定体积Sv≤50μL(可以预优化)的待测样本加至96孔板的孔中,不足50μL则用提取液补至50μL;
- 吸取上述G6PDH分析液,按每孔50μL加至样本和标准溶液各孔中,每孔共100μL,置摇床或用移液器混匀;
- 37ºC,避光,反应5-10 min(如果显色淡 可以延长15-30min);
3. 酶标仪测 450 nm (A450)
D:样品中G6PDH活性的计算
1. 将0 mU标准溶液作为背景对照。将全部(标准品和样品)的吸光度减去背景对照的吸光度
2. 以标准溶液G6PDH浓度为横坐标,减去背景值的吸光度为纵坐标,绘制出标准曲线。
依据标准曲线 从样品的吸光度 确定样本的活力单位数(Su)。
则样本G6PDH的活性为 Su/Sv
(Su:样本的活力单位数mU,Sv:加入孔里的样本体积, 见C2步)
例:某样本
Su = 5.84 mU
Sv = 50 μL
其G6PDH的活性 = 5.84mU /50μL= 116.8 U/L