1. 配制CFSE原液
每50 µg的CFSE加入18μL的DMSO,溶解配成5mM的原液,于24小时内使用完毕,不宜储存。
2. 配制CFSE工作液
用PBS将5mM CFSE原液(1000X)稀释至5µM的工作液,即每mL PBS加入1μL的CFSE原液,18μL原液可稀释成18mL的标记工作液,将工作液置37℃预热。
(注:超过约三天的长期染色或快速分裂的细胞需5-10μM较高浓度的CFSE。对于较短期实验,如活力测定,则需0.5-5μM较低浓度的CFSE。为保持细胞生理正常并减少过载干扰,染料浓度应该保持尽可能低的水平,最好根据具体细胞类型进行滴定,以确定最合适的浓度。使用显微镜观测可能需要比上述流式细胞高五倍的浓度。)
3、细胞标记
悬浮细胞:离心收集,每106个细胞加1mL 37℃预热的标记工作液重悬,避光、室温或37℃孵育20min,其间轻摇数次;
贴壁细胞:弃培养基,加入37℃预热的标记工作液,避光、37℃孵育20min。
4、悬浮细胞:离心收集, 加入标记工作液5倍体积的新配37℃预热培养基, 37℃孵育5min;(去除游离染料)
贴壁细胞:弃标记工作液,用新配37℃预热培养基洗二次。
5、悬浮细胞:离心收集,加入新配37℃预热的完全培养基,37℃继续孵育15-30min(使染料醋酸根水解);
贴壁细胞:加入新配37℃预热的完全培养基,37℃继续孵育15-30min。
6、接续的实验,如细胞刺激、加药、培养、固定、通透、其它标记或分析
如需用流式追踪细胞的分裂代次,则培养时间至分裂代次的完成,可长达数天甚至数周。
如需固定和通透,则将标记CFSE后的细胞加入PBS洗一次,使用醛类固定剂,如多聚甲醛,室温、避光固定15-20 min,可使用常规通透剂进行通透,通透后再用PBS洗涤细胞,进行后续分析。
如需进行其它标记,将标记CFSE后的细胞用后续标记物推荐的缓冲液重悬,再进行标记,包括免疫表型、DNA含量、凋亡或其它推荐的染料。
7、分析
流式细胞仪:用488nm波长激发,530 nm FITC通道(FL1)检测分析。对于细胞分裂代次的追踪,建议将标记等量未分裂的亲本细胞作为阴性对照同时检测,以示增殖前的初始细胞荧光峰的位置和数量。
荧光显微镜等成像系统: 滴加抗荧光淬灭剂的介质,激发并用FITC滤光片观察拍照、分析。
荧光酶标仪:可以定量活细胞数,但需建立接种细胞密度的标准曲线,以确保荧光信号在线性范围内并与细胞数成正比。