A、 检测样本的预处理
TUNEL检测时样本的预处理是试验的关键所在,本说明书推荐的条件仅为普遍情况,用户需根椐自已的样本材料及首次试验结果来调整各个条件,如处理时间、处理浓度等,来优化出适合自身样本的试验条件,从而做出客观的试验结果。
1、 对于细胞样本
a、 把准备好的细胞涂片或爬片自然晾干。
b、 把晾干的样本浸入固定液,室温(15-25℃)固定15-60min。
(固定液的配制:4%多聚甲醛溶于PH7.4的PBS中,需新鲜配制)
c、 把固定好的样本浸入PBS漂洗3次,每次5min。
d、 把c步处理好的样本浸入封闭液中,室温(15-25℃)封闭10min。
(封闭液的配制: 3%H2O2溶于无水甲醇)
e、 把d步处理好的样本浸入PBS漂洗3次,每次5min。
f、 把e步处理好的样本浸入通透液中,冰上(2-8℃)促渗2min。
(通透液的配制:0.1%TritonX-100溶于0.1%柠檬酸钠,需新鲜配制)
g、 然后转入B步骤标记反应。
注意事项:
a、 为防止样本脱落,请使用硅烷(Silane)处理的载玻片或采用多聚赖氨酸铺片。
b、 固定好的样本可以在-20℃的70%乙醇中放置30分钟~一晚,以改善细胞的渗透性。
c、 使用PBS漂洗细胞样本时,不要直接加在细胞样本上,以防止细胞样本的脱落。
d、 固定液、PBS、封闭液、通透液、染色缸需用户自备,请按上述方法配制。
2、 对于石蜡切片
a、 按常规方法将石蜡切片进行脱蜡及水合
(如:二甲苯脱蜡2次,每次5-10 min;乙醇水合(将脱蜡好的的切片依次放入100%乙醇、95%乙醇、90%乙醇、80%乙醇、70%乙醇2min))
b、 把a步处理好的样本浸入PBS漂洗3次,每次5min。
c、 把b步处理好的样本加入蛋白酶K工作液, 21-37℃作用15-30min。
(蛋白酶K工作液的配制:2μL 50×蛋白酶 K+98μL PBS)
d、 把c步处理好的样本浸入PBS漂洗3次,每次5min。
e、 把d步处理好的样本浸入封闭液中,室温(15-25℃)封闭10min。
(封闭液的配制: 3%H2O2溶于甲醇)
f、 把e步处理好的样本浸入PBS漂洗2次,每次5min。
g、 然后转入B步骤标记反应。
注意事项:
a、 蛋白酶K处理的使用浓度、处理时间及温度,都因组织的类型不同而有所不同,需要自已摸索优化上述条件,如有问题,请根椐本说明书的《常见问题的原因及推荐解决方案》来调整条件。例如:如果凋亡细胞染色较弱时,可用高浓度的Proteinase K(400μg/mL)处理5分钟。(本试剂盒的50×Proteinase K浓度为1mg/mL)。
b、 其它替代方法: 石蜡切片的预处理也可根椐实际情况可采用下述三种替代方法之一,即蛋白酶K处理的步聚改用下述方法,其余步聚均相同:
替代方法1:
将脱蜡及水合好的切片浸入通透液中8-10 min(通透液的配制:0.1%TritonX-100溶于0.1%柠檬酸钠,需新鲜配制)
替代方法2:
将脱蜡及水合好的切片浸入胃蛋白酶或胰蛋白酶中8-10 min(胃蛋白酶溶液的配制:0.25%-0.5%溶于HCl PH2;胰蛋白酶溶液的配制:0.25%-0.5%溶于0.01N HCl )
替代方法3:
将脱蜡及水合好的切片浸入含200ml 0.1M的柠檬酸缓冲液PH= 6 的塑料盒中,置于微波炉中350W(低档)处理5 min。为防止样本脱落,请使用硅烷(Silane)处理的载玻片或采用多聚赖氨酸铺片。
c、 使用酶处理切片时一定要把酶洗涤干净,否则会严重干扰后续的标记反应。
3、 对于冷冻切片
a、 把冰冻切片浸入固定液,室温(15-25℃)固定30min。
(固定液的配制:4%多聚甲醛溶于PH7.4的PBS中,需新鲜配制)
b、 把a步处理好的样本浸入PBS漂洗2次,每次15min。
c、 把b步处理好的样本浸入封闭液中,室温(15-25℃)封闭10min。
(封闭液的配制: 3%H2O2溶于甲醇)
d、 把c步处理好的样本浸入PBS漂洗2次,每次5min。
e、 把d步处理好的样本浸入通透液中,冰上(2-8℃)促渗2min
(通透液的配制:0.1%TritonX-100溶于0.1%柠檬酸钠,需新鲜配制)
f、 然后转入B步骤标记反应。
4、对于难处理的切片
a、 按常规方法将石蜡切片进行脱蜡及水合
(如:二甲苯脱蜡2次,每次5-10 min;乙醇水合(将脱蜡好的的切片依次放入100%乙醇、95%乙醇、90%乙醇、80%乙醇、70%乙醇2min))
b、 把a步处理好的样本浸入PBS漂洗2次,每次5min。
c、 把b步处理好的样本加入浸入含200ml 0.1M的柠檬酸缓冲液PH= 6 的塑料盒中,置于微波炉中750W(高档)处理1 min
d、 迅速加入80ml双蒸水(20-25℃)加入c步处理好切片的塑料盒中,冷却至室温, 将组织切片转移至PBS(20-25℃)中。
e、 把d步处理好的样本浸入封闭液中,室温(15-25℃)封闭10min。
(封闭液的配制: 0.1M Tris-HCl PH 7.5、3%BSA、20%小牛血清)
f、 把e步处理好的样本浸入PBS漂洗2次,每次10min。
g、 然后转入B步骤标记反应。
5、 阳性对照及阴性对照的准备
TUNEL检测同时需要设阳性和阴性对照,以显示试验的客观性及准确性。因此需要按下述方法准备两个样本来制备阳性及阴性片,其后续步聚与待测样本同样进行。
a、 阳性对照样本的准备
组织样本在蛋白酶K处理、PBS浸洗后,细胞样本在Triton X-100通透液处理、PBS浸洗后,再加入100μL DNase I反应液(用户自备)室温—37℃处理10 -30 min,其余步骤均相同。
(DNase I反应液的配制:10u-3000u DNase I,40mM Tris-HCl PH 7.9,10 mM NaCl, 6mM MgCl2, 10mM CaCl2)
b、 阴性对照样本的准备
在标记反应的过程中不添加TdT酶反应液,其余步骤均相同。
B、标记反应:
1、预处理好的样本PBS漂洗2次,每次5min后,样本周围用滤纸或吸水纸吸干。
2、配制TdT酶反应液:
参考下表配制适当量的TdT酶反应液(根据需要按照比例放大),需充分混匀。注意:配制好的TdT酶反应液必须一次使用完毕,不能冻存。
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1个样品
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5个样品
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10个样品
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平衡液
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45µl
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225µl
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450µl
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绿色荧光标记液
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1µl
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5µl
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10µl
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TdT酶
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4µl
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20µl
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40µl
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TdT酶反应液总体积
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50µl
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250µl
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500µl
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3、每个样本滴加50μL TdT酶反应液,加盖玻片37℃避光湿润反应60min。(阴性对照片不加TdT酶)
4、 把第3步处理好的样本浸入PBS漂洗3次,每次5min。
5、荧光显微镜下观察,可以使用的激发波长范围为450-500nm,发射波长范围为515-565nm(绿色荧光)。
操作注意事项:
1、PBS清洗后,为了各种反应的有效进行,请尽量除去PBS溶液后再进行下一步反应。
2、在载玻片上的样本上加上实验用反应液后,请盖上盖玻片或保鲜膜,或在湿盒中进行,这样可以使反应液均匀分布于样本整体,又可以防止反应液干燥造成实验失败。
3、TdT酶反应液即用即配,短暂于冰上保存。不宜长期保存,长期保存会导酶活性的失活。