1、JC-1染色工作液的配制:
a、取100μL 10×染色结合液加900μL灭菌双蒸水稀释成1×染色结合液,混匀并预热至37℃;
b、吸取500μL 1×染色结合液,加入1μL JC-1,剧烈Vortex充分溶解,混匀配成JC-1工作液;
c、因JC-1在水中的溶解度很小,所以可以通过离心的方法(10,000rpm,1min)去除不溶的颗粒,吸取离心后的上清使用,以消除干扰。离心后的上清为JC-1工作液
2、用适当的方法诱导细胞凋亡,同时设立阴性对照组和阳性对照组【用适当的凋亡诱导剂,诱导适当时间后经其它检测(如AnnexinV或 Caspase 3活性)证实确有凋亡产生】,收集细胞;
3、用PBS洗涤细胞二次(离心2000rpm,5min),收集不多于1×106的细胞;
4、取500μL JC-1工作液将细胞均匀悬浮,37℃,5%CO2的培养箱中孵育15~20min;
5、室温离心(2000rpm,5min)收集细胞,用500μL 1×染色结合液洗涤两次;
6、吸取500μL 1×染色结合液重新悬浮细胞;
7、荧光显微镜观察或流式细胞仪分析。
A、荧光显微镜观察
1、滴一滴上述细胞悬液于载玻片,盖上盖玻片,于荧光显微镜下观察;
2、对于贴壁细胞来说,也可直接用盖玻片来培养细胞并诱导细胞凋亡;用PBS洗涤细胞两次;
滴加100μL JC-1工作液,加盖玻片,37℃,5%CO2的培养箱中孵育15~20min;1×染色结合液洗涤1~2遍;将盖玻片倒置于载玻片上,于荧光显微镜下观察;
检测JC-1单体时可以把激发光设置为490nm,发射光设置为530nm;检测JC-1聚合物时,可以把激发光设置为525nm,发射光设置为590nm。注意:此处测定荧光时不必把激发光和发射光设置在最大激发波长和最大发射波长。如使用荧光显微镜观察,检测JC-1单体时可以参考观察其它绿色荧光时的设置,如观察GFP或FITC时的设置;检测JC-1聚合物时可以参考观察其它红色荧光,如碘化丙啶或Cy3时的设置。出现绿色荧光说明线粒体膜电位下降,并且该细胞很可能处于细胞凋亡早期。出现红色荧光说明线粒体膜电位比较正常,细胞的状态也比较正常。
B、流式细胞仪分析
用流式细胞仪检测(Ex=488 nm; Em=530 nm)细胞凋亡的情况,绿色荧光通过FITC通道通常为FL1来检测;红色荧光通过PI通道通常为FL2来检测。正常细胞{FL-1亮,FL-2亮; R1},凋亡细胞 {FL-1亮, FL-2暗; R2},设门的位置根椐细胞种类、实验条件等不同而变化,试验需设未经处理的正常细胞为阴性对照组和阳性对照组,根椐阴性和阳性对照组的双参数散点图来设定门的位置。