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Click EdU-AF488 细胞增殖分析试剂盒(流式法) 绿
Catalog Number: EGY01512
Amount: 25次
Applications: Reactivity:
产品类型: Unconjugated
发货周期: 现货
说明书:     PDF
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概述
  • Catalog Number:

    EGY01512
  • Amount:

    25次
  • 产品简介


    EdU法是除同位素法之外,当前的检测细胞增殖方法,是替代Brdu法的革命性突破。

    EdU(5-乙炔基-2'-脱氧尿嘧啶)在DNA合成期掺入DNA双链, EdU的炔烃基与叠氮荧光素的叠氮基通过Click反应(一种由铜催化的叠氮物和炔烃的共价反应,亦称 点击反应)结合,使掺入EdU的增殖细胞DNA标记上荧光素(图1),通过检测荧光信号,灵敏。快速地检出增殖的细胞,未增殖的细胞EdU没有掺入而无荧光素标记和荧光信号(图2)。

     

    本品的特点:

        准确性高、灵敏度高: 直接检测DNA合成,相比MTT、CCK8等检测细胞代谢物的间接法更精准,并且减少Brdu法因变性和抗体产生的假信号;

    操作简便、快速:  仅需3-6步60-90分钟即可完成。比Brdu法减少了变性和抗体标记步骤

    兼容性高:支持多重标记,多指标、多方法检测,EdU法可更好地保存细胞形态、抗原结构和 DNA 完整性,适于固定细胞 用抗体(免疫组化法、免疫细胞化学法、免疫荧光法)与荧光染料同时标记 , 适配荧光成像系统、流式细胞仪、荧光光度或酶标仪检测,可同时进行细胞周期等多种标志物的分析。

            图1   EdU标记DNA原理

  • 试剂盒组份


    组份

    EGY0151110tests)

    EGY0151225tests)

    EGY0151350tests)

    EGY01514100tests)

    保存

    组份A: EdU

    400µL

    1mL

    2×1mL

    2×2mL

    -20℃

    组份B: 叠氮荧光素 488

    30µL

    75µL

    150µL

    300µL

    -20 ℃,避光

    组份C 固定液

    1mL

    2.5mL

    5mL

    10mL

    2–8°C

    组份D10×通透洗涤液

    10mL

    25mL

    50mL

    2×50mL

    2–8°C

    组份E CuSO4溶液

    200µL

    0.5mL

    1mL

    2mL

    2–8°C

    组份F Click Buffer 添加物

    40mg

    100mg

    200mg

    400mg

    2–8°C,干燥

  • 试剂盒以外自备仪器和试剂


    用户自备试剂

     1% BSA in PBS  pH 7.1–pH 7.4                                 

     PBS, 或D-PBS, 或TBS

     去离子水或超纯水

     流式管   

  • 操作步骤


    1、 EdU标记细胞  (即细胞DNA合成时掺入EdU)和(可选)标记细胞表面抗体

    1.1   培养细胞,于每mL新更换的新鲜培养基中加入1.0µL组份A,使EdU终浓度达10μM。

    (注:该浓度仅供参考,标记效果受细胞密度、类型、培养基种类等因素影响,最好预试验确定合适宜的EdU,终浓度一般为1-10μM或参考附表1-2,如果提高浓度,则缩短下步的孵育时间;阴性对照不加EdU,如为血液样本,采血时需用肝素抗凝。)

    1.2   细胞继续培养按原条件培养孵育1-2h;

    (注: 孵育时间取决于细胞生长速率,可预试验确定或参考附表1);

    1.3   (可选)标记细胞表面抗体:每107个细胞加3mL含1%BSA的PBS洗二遍后,加1mL重悬,取100µL(106个)与标记抗体混合,按抗体标记说明书并避光操作

    (注:在第3步click反应标记荧光素之前,不可使用PE, PE-连接物, 或量子点 抗体偶联物,尽快进行2.1步固定细胞)

    2、细胞固定及促渗

    2.1  细胞加3mL的1%BSA in PBS洗一遍,离心弃上清,于沉淀中加入100µL组份C,室温避光固定15 min;

    2.2  离心弃上清,于细胞沉淀中加3mL含1%BSA的PBS洗一遍; 

    2.3  离心弃上清,于细胞沉淀中加入100 µL的 1×组份D(组份D用1%BSA in PBS 稀释10倍即得)通透,室温避光孵育15 min或直接进行3.1步的Click反应; 

    3、Click反应,使DNA-EdU标记上荧光素 

    3.1   配制Click  Buffer 添加物

    组份简称

    组份全称

    配制方法

    10×组份F

    10×Click Buffer 添加物

    每200mg组份F加1mLdH2O溶解,保存于-20℃ 1年,如变棕色失效。 

    1×组份F

    1×Click Buffer 添加物

    10×组份F以dH2O稀释成1×组份F,即用即配。

     

     

     

     

    3.2   配制Click反应液 (务必按下表的顺序依次添加各组份)

    反应组份

    反应数

    1

    2

    5

    10

    15

    25

    50

    100

    PBS, D-PBS, or TBS

    438µL

    875µL

    2.19mL

    4.38mL

    6.57mL

    10.95mL

    21.9mL

    43.8mL

    组份C: CuSO4

    10µL

    20µL

    50µL

    100µL

    150µL

    250 µL

    500 µL

    1mL

    组份B :叠氮荧光素488 

    2.5µL

    5µL

    12.5µL

    25µL

    37.5µL

    62.5 µL

    125µL

    250 µL

    1×组份F:1X Click Buffer 添加物

    50µL

    100µL

    250µL

    500µL L

    750µL

    1.25mL

    2.5mL

    5mL

    总体积

    500µL

    1mL

    2.5mL

    5mL

    7.5mL

    12.5mL

    25mL

    50mL

     

    3.3  细胞弃通透洗涤液,每管加上述配好的 0.5mL Click反应液并摇匀,室温避光孵育30min;

    3.4  离心弃Click反应液,每管加3mL1×通透洗涤液(1×组份D)洗1次;

    3.5   细胞沉淀, 选择如下操作:

    加500µL 1×通透洗涤液重悬,直接上流式细胞仪(步骤 6)检测,

    或加100µL 1×通透洗涤液重悬,选择4.1-4.4 (抗体标记细胞内或表面抗原)、

    或加500µL 1×通透洗涤液重悬,选择5.1-5.2(检测细胞DNA含量)

    4、(可选) 同时用抗体标记细胞内或表面抗原

    4.1   加抗胞内或表面抗原的荧光蛋白(RPE、PE-连接或量子点)偶联抗体,混匀;

    4.2   按抗体说明书要求的时间和温度,避光孵育,

    4.3   每管加3mL的1×通透洗涤液洗一遍,离心弃上清, 

    4.4   细胞沉淀,选择如下操作:

    加500µL 1×通透洗涤液重悬,直接上流式细胞仪(步骤 6)检测,

    或加500µL 1×通透洗涤液重悬,选择5.1-5.2(检测细胞DNA含量)

    5、(可选)同时检测细胞DNA含量

    5.1   每管加入PI核DNA染料和RNA酶(按细胞核或细胞周期染料说明书操作);

    5.2   参考细胞核染料说明书,避光孵育10-15min;

    6、 流式细胞仪分析

    EdU-F488     激发488nm,发射波长530/30nm,

    核DNA染料和流式抗体的荧光光谱请参考相关产品说明书。传统流式细胞仪上检测总DNA 含量,收集过程中需使用低流速。DNA含量的染料荧光信号以线性放大方式检测,而Click标记EdU生成的荧光信号最好通过对数放大方式来检测。

          

    图2:  EdU-F647单染 检测增殖细胞           图3:EdU-F647/SYTOX 双染检测DNA含量并区分细胞周期

    附:  EdUBrdU 双标法检测细胞增殖的策略

    按如下策略用 EdU 与 BrdU 对培养细胞进行双标:

    •  用 EdU 进行首轮标记,  BrdU 用于第二轮标记。

    •  用 BrdU 进行第二轮标记时,不需要从细胞培养基中去除 EdU。

    •  EdU和 BrdU同时存在时 ,BrdU优先掺入 DNA合成,而 EdU不会

    同时掺入, 此特点简化了双标记时通常需要洗涤去除前一标记物的步骤,。

    •   在采用验证过的 BrdU 标记方法进行二轮标记后再处理细胞。

    •   在 BrdU标记时的 DNA 变性步骤之后,首先进行click反应以标记EdU,

    然后按抗体标记方法检测BrdU。

    •    选择对 EDU 没有交叉反应的 BrdU 抗体。

    图4: EdU和BrdU 双标检测细胞增殖

     

    附表:

    表1   EdU孵育时间设定参考

    细胞系

    人胚胎细胞

    酵母细胞

    人成纤维细胞

    人宫颈癌细胞

    人胚肾细胞系

    人神经细胞

    细胞周期

    ~30min

    ~3h

    ~18h

    ~21h

    ~25h

    ~5d

    孵育时间

    5min

    20min

    2h

    2h

    2h

    1d

     

    表2 细胞实验EdU孵育浓度及时间参考

    PubMed ID

    Reference

    Cell line

    Concentration

    Time

    18272492

    Salic A, et al. PNAS. 2008

    NIH3T3, Hela

    10 nM~10 μM

    1 hr

    18521918

    Cappella P,et al. Cytometry A. 2008

    HL-60, A2780, U2OS

    1~10 μM

    30 min

    18996411

    Chehrehasa F, et al. J Neurosci Methods. 2009

    Neurospheres

    1~20 μM

    24 hr

    19179371

    Limsirichaikul S, et al. Nucleic Acids Res. 2009

    Primary fibroblasts

    10 μM

    1,2,4 hr

    19253396

    Warren M, et al. Dev Dyn. 2009

    Chick embryos

    10 μM~2 mM

    4 hr

    19647746

    Yu Y, et al. J Immunol Methods. 2009

    Spleen cells

    50 μM

    24 hr

    19544417

    Momcilović O, et al. Stem Cells. 2009

    Human ES cells

    10 μM

    30 min

    20080700

    Cinquin O, et al. PNAS. 2010

    emb-30

    1 μM

    12 hr

    20025889

    Han W, et al. Life Sci. 2009

    VSMC

    50 μM

    2 hr

    20659708

    Huang C, et al. J Genet Genomics. 2010

    ESC

    50 μM

    2 hr

    21310713

    Hua H, et al. Nucleic Acids Res. 2011

    fission yeast strains

    10 μM

    3 hr

    20824490

    Lv L, et al. Mol Cell Biochem. 2011

    EJ cells

    50 μM

    4hr

    21248284

    Yang S, et al. Biol Reprod. 2011

    GC cells

    50 μM

    2 hr

    21227924

    Zhang YW, et al. Nucleic Acids Res. 2011

    U2OS, HT29

    30 μM

    90 min

    21829621

    Guo T, et al. PloS One. 2011

    HIT-T15

    50 μM

    4hr

    21980430

    Zeng T, et al. PloS One. 2011

    MCF-10A

    25 μM

    2hr

    22012572

    Ding D, et al. Int Orthop. 2011

    C3H10T1/2

    10 μM

    24hr

    22000787

    Zeng W, et al. Biomaterials. 2011

    EPC

    50 μM

    4hr

    21913215

    Xue Z, et al. J Cell Biochem. 2011

    SGC7901

    25 μM

    24hr

    22016038

    Peng F, et al. Lasers Med Sci. 2011

    MSC

    50 μM

    2hr

    21878637

    Li D, et al. J Biol Chem. 2011

    HCC

    50 μM

    2hr

     

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