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Click EdU-AF488 细胞增殖分析试剂盒(成像法) 绿
Catalog Number: EGY01411
Amount: 25-250次
Applications: Reactivity:
产品类型: Unconjugated
发货周期: 现货
说明书:     PDF
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概述
  • Catalog Number:

    EGY01411
  • Amount:

    25-250次
  • 产品简介


    EdU法是除同位素法之外,当前的检测细胞增殖方法,是替代Brdu法的革命性突破。

    EdU(5-乙炔基-2'-脱氧尿嘧啶)在DNA合成期掺入DNA双链,EdU炔烃与荧光素叠氮物通过Click反应(一种由铜催化的叠氮物和炔烃的共价反应,亦称点击反应)结合,使掺入EdU的增殖细胞DNA标记上荧光素,通过检测荧光信号,灵敏。快速地检出增殖的细胞(图1),未增殖的细胞则只标记Hoechst 33342而发出蓝色荧光信号。

    本品的特点:

         准确性高、灵敏度高: 直接检测DNA合成,相比MTT、CCK8等检测细胞代谢物的间接法更精准,并且减少Brdu法因变性和抗体产生的假信号;

    操作简便、快速:  仅需5步60分钟即可完成。比Brdu法减少了变性和抗体标记步骤;

    兼容性高:支持多重标记,多指标、多方法检测,EdU法可更好地保存细胞形态、抗原结构和 DNA 完整性,适于固定细胞 用抗体(免疫组化法、免疫细胞化学法)与荧光染料同时标记,适配荧光成像仪、流式细胞仪、荧光光度或酶标仪检测,可同时进行细胞周期等多种标志物的分析。

           图1   EdU标记DNA原理

  • 试剂盒组份


    组份

    EGY01411(25/250tests)

    EGY01412

    50/500tests)

    EGY01413

    100/1000tests)

    保存

    组份A:EdU

    1 mL

    2 × 1 mL

    2×2 mL

    -20 ℃

    组份B:叠氮荧光素488

    50µL

    100µL

    200µL

    -20 ℃,避光

    组份C:10× Click 反应 Buffer

    2 mL

    4 mL

    8 mL

    2-8 ℃

    组份D:CuSO4 

    0.5 mL

    1 mL

    2 mL

    2-8 ℃

    组份E:Click Buffer 添加物

    100mg

    200mg

    400mg

    2-8 ℃

    组份F:10× Hoechst 33342

    35µL

    70µL

    140µL

    2-8℃,干燥

    说明:  每张玻片50µL标记液的用量计算,本品可提供250、500、1000张试剂用

    孔板每孔500µL标记液的用量计算,本品可提供25、50100孔试剂用 

     

     

  • 试剂盒以外自备仪器和试剂


    ² PBS, pH7.2-7.6

    ² 固定液(例:3.7%甲醛 in PBS,或戊二醛等)

    ² 促渗液(例:0.5% Triton X-100 in PBS,或皂苷等 )

    ² 清洗液:3% BSA in PBS pH7.4

    ² 去离子水

    ² 多孔板和 18 × 18-mm 盖玻片

  • 操作步骤


    1、 EdU标记细胞  (即细胞DNA合成时掺入EdU

    1.1   取10 µL 组份A(10mM EdU),加入5mL完全培养基配成EdU标记液(足够染10张细胞爬片),

    1.2   将原细胞培养基弃去一半,加入等体积的EdU标记液(注: 此 EdU终浓度为10µM仅供参考,可据细胞类型进行梯度预试验以确定最佳浓度,可参考附表2);

    1.3   细胞继续培养孵育2h;(注:孵育时间取决于细胞生长速率,不同细胞参考附表)

    2、细胞固定及促渗

    2.1  弃标记液和培养基,每片/孔加入1mL 固定液(3.7%甲醛in PBS),室温孵育15min;

    2.2  弃固定液,每片/孔以清洗液(3% BSA in PBS)洗细胞2次; 

    2.3  弃洗涤液,每片/孔加1mL促渗液(0.5% Triton X-100 in PBS),室温孵育20min。

    3、Click反应,使DNA-EdU标记上荧光素 

    3.1   配制Click反应组份

     

    组份简称

    组份全称

    配制方法

    1×组份C

    1× Click反应Buffer

    将组份C用dH2O稀释10倍(4mL组份C加36mL的dH2O)

    10×组份E

    10×Click Buffer 添加物

    每200mg组份E 加1mLdH2O溶解,保存于-20℃ 1年,如变棕色失效。 

    1×组份E

    1×Click Buffer 添加物

    10×组份E以dH2O稀释成1×组份E,即用即配。

     

     

     

     

     

    3.2   配制Click反应液 (务必按下表的顺序依次添加各组份)

    反应组份

    反应数目

    1

    2

    4

    10

    25

    50

    1×组份C  (1×Click反应Buffer)

    430µL

    860µL

    1.8mL

    4.3mL

    10.75mL

    21.5 mL

    组份D      (CuSO4 )

    20µL

    40µL

    80µL

    200µL

    500µL

    1mL

    组份 B   (叠氮荧光素488) 

    1.5µL

    3µL

    6µL

    15µL

    37.5µL

    75µL

    1×组份E  (1×Click Buffer 添加物)

    50µL

    100µL

    200µL

    500µL

    1.25mL

    2.5mL

    总体积

    500µL

    1mL

    2mL

    5mL

    12.5mL

    25mL

    注:每个反应使用500µL的Click反应液,用户可以根据样本调整用量。

    3.3  弃促渗液,每片/孔加清洗液(3% BSA in PBS)洗2次; 

    3.4  弃清洗液,每片/孔加0.5mL Click反应液并摇匀,室温避光孵育30min;

    3.5  弃Click反应液,每片/孔加1mL 加清洗液(3% BSA in PBS)洗2次,弃清洗液;

    4、Hoechst 33342复染DNA 

    4.1   每片/孔加1mL PBS洗1次;

    4.2   每片/孔加1mL 1×Hoechst 33342染液(组份F:PBS=1:2000,终浓度为5µg/mL)

    4.3   室温避光孵育15-30min,弃Hoechst 33342染液。

    4.4   每片/孔加1mL PBS洗2次,弃PBS;

    4.5   推荐:此时可多重标记,如标记一抗和二抗, 注意避光;

  • 试剂盒组成与荧光特征


     荧光显微镜等成像系统的激光器与滤光片组 按下表选择:

     

    Hoechst 33342

    荧光素488

    Ex/Em (nm)

    350/461

    495/519

    滤光片组 

    DAPI

    FITC

    未增殖的细胞核标记Hoechst 33342呈蓝色,增殖细胞EdU-F488单染呈绿色。

     

    附表:

    表1   EdU孵育时间设定参考

    细胞系

    人胚胎细胞

    酵母细胞

    人成纤维细胞

    人宫颈癌细胞

    人胚肾细胞系

    人神经细胞

    细胞周期

    ~30min

    ~3h

    ~18h

    ~21h

    ~25h

    ~5d

    孵育时间

    5min

    20min

    2h

    2h

    2h

    1d

     

    表2 细胞实验EdU孵育浓度及时间参考

    PubMed ID

    Reference

    Cell line

    Concentration

    Time

    18272492

    Salic A, et al. PNAS. 2008

    NIH3T3, Hela

    10 nM~10 μM

    1 hr

    18521918

    Cappella P,et al. Cytometry A. 2008

    HL-60, A2780, U2OS

    1~10 μM

    30 min

    18996411

    Chehrehasa F, et al. J Neurosci Methods. 2009

    Neurospheres

    1~20 μM

    24 hr

    19179371

    Limsirichaikul S, et al. Nucleic Acids Res. 2009

    Primary fibroblasts

    10 μM

    1,2,4 hr

    19253396

    Warren M, et al. Dev Dyn. 2009

    Chick embryos

    10 μM~2 mM

    4 hr

    19647746

    Yu Y, et al. J Immunol Methods. 2009

    Spleen cells

    50 μM

    24 hr

    19544417

    Momcilović O, et al. Stem Cells. 2009

    Human ES cells

    10 μM

    30 min

    20080700

    Cinquin O, et al. PNAS. 2010

    emb-30

    1 μM

    12 hr

    20025889

    Han W, et al. Life Sci. 2009

    VSMC

    50 μM

    2 hr

    20659708

    Huang C, et al. J Genet Genomics. 2010

    ESC

    50 μM

    2 hr

    21310713

    Hua H, et al. Nucleic Acids Res. 2011

    fission yeast strains

    10 μM

    3 hr

    20824490

    Lv L, et al. Mol Cell Biochem. 2011

    EJ cells

    50 μM

    4hr

    21248284

    Yang S, et al. Biol Reprod. 2011

    GC cells

    50 μM

    2 hr

    21227924

    Zhang YW, et al. Nucleic Acids Res. 2011

    U2OS, HT29

    30 μM

    90 min

    21829621

    Guo T, et al. PloS One. 2011

    HIT-T15

    50 μM

    4hr

    21980430

    Zeng T, et al. PloS One. 2011

    MCF-10A

    25 μM

    2hr

    22012572

    Ding D, et al. Int Orthop. 2011

    C3H10T1/2

    10 μM

    24hr

    22000787

    Zeng W, et al. Biomaterials. 2011

    EPC

    50 μM

    4hr

    21913215

    Xue Z, et al. J Cell Biochem. 2011

    SGC7901

    25 μM

    24hr

    22016038

    Peng F, et al. Lasers Med Sci. 2011

    MSC

    50 μM

    2hr

    21878637

    Li D, et al. J Biol Chem. 2011

    HCC

    50 μM

    2hr

     

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