1. 即用即配10% APS-S(过硫酸铵替代物溶液)
组份D干粉溶于10 mL的 dH2O中,即为10% APS-S , 应即用即配,4℃可保存1-2周,-20℃可保存数月。
2. 参考下表(单张胶的用量)选择和配制下层分离胶
Bis-Tris胶浓度
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8%
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10%
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12%
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dH2O
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2.5 mL
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2.25 mL
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2.0 mL
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Bis-Tris Buffer
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1.45 mL
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1.45 mL
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1.45 mL
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Bis-Tris分离胶
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1 mL
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1.25 mL
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1.5 mL
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10% APS-S
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50 μL
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50 μL
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50 μL
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总体积
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5 mL
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5 mL
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5 mL
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事先备好灌胶玻璃板,按dH2O、Buffer、分离胶的顺序配制,最后加入10% APS-S,然后立即灌胶。
3. 按下表(二张胶的参考用量)配制上层浓缩胶并在下层胶凝后灌胶
组分
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上层浓缩胶(2张)
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dH2O
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1.70 mL
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Bis-Tris Buffer
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0.86 mL
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Bis -Tris 浓缩胶(红色)
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0.40 mL
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10% APS-S
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30 μL
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总体积(二块胶)
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3 mL
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下层胶凝聚后,在上述混合液中最后加入10%APS-S,然后立即灌胶并插入加样梳。
注意事项:
- 蛋白分离效果依赖PAGE胶种类与浓度、缓冲体系、电泳条件,请依据样本特点参考《凝胶选择指南表》(附2)进行选择。请按指南选择适配的凝胶体系、上样Buffer、电泳buffer和转膜 Buffer。
- 胶液无需抽真空脱气,但配制过程中尽量避免混入空气。
- 丙烯酰胺和甲叉双丙烯酰胺未聚合之前有毒性,操作切注意防护,避免碰溅到皮肤和粘膜,如不小心滴洒到皮肤,立即用大量水冲洗即可,凝胶聚合后,则无毒性。
- 温度高可提高凝聚速度,可将Buffer和dH2O适当预热,或将灌好胶板置于 37-40℃的温箱,以加速凝聚。
附1:Bis-Tris SDS-PAGE凝胶的上样、电泳和转膜方法参考
Bis-Tris 预混胶仅适用于变性凝胶电泳, 为获得理想的电泳效果,推荐使用LDS 样本Buffer,分离偏低分子量蛋白时应配合使用 MES电泳Buffer,分离中至高分子量蛋白时应配合使用 MOPS 电泳Buffer,进行Western Blotting时,请使用Bis-Tris 转膜Buffer,电泳和转膜时需加入配套的样本稳定剂,则可保证蛋白的还原性。分子量参考表1,或根椐经典Tris-Glycine凝胶浓度转换选择Bis-Tris电泳体系参考表2:
表1:分子量与胶浓度选择参考
Bis-Tris胶浓度
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8%
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10%
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12%
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分离范围(MES 电泳 buffer) 低分子量
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3.5-160kDa
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3.5-160kDa
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3.5-40kDa
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分离范围kDa (MOPS 电泳 buffer) 高分子量
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30-280kDa
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15-260kDa
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10-80
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表2:Tris-Glycine凝胶浓度转换Bis-Tris电泳体系参考
Tris-甘氨酸 Gel
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Bis-Tris Gel
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6-8%
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7% Tris-乙酸Gel+TA Buffer
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10%
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10% + MOPS Buffer
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12%
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10% + MOPS Buffer
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14%
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12% + MOPS Buffer
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16%
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12% + MES Buffer
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18%
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12% + MES Buffer
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上样、电泳和转膜相关Buffer选择配制及操作方法如下:
1、样本预处理
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还原性样本
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非还原性样本
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样本
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x μL
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x μL
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4 x LDS样本Buffer
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2.5 μL
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2.5 μL
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1M DTT(自备)
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0.5 μL
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0
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dH2O 补足至
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10 μL
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10 μL
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热变性
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70℃ 10 min
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70℃ 10 min
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2 电泳
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还原性样本
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非还原性样本
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电泳Buffer
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20 x MOPS电泳Buffer 25mL
或20 x MES电泳Buffer 25mL
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20 x MOPS电泳Buffer 25mL
或20 x MES电泳Buffer 25mL
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800×稳定剂
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0.625 mL
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0
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dH2O 补足至
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500 mL
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500 mL
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电压、电流
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200V. 100-125 mA
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电泳时间
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35 min(MES 电泳Buffer),50min (MOPS 电泳Buffer)
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选用MOPS电泳Buffer或 MES电泳Buffer取决于目标蛋白的分子量,具体参考表1和表2.。
3 转膜
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还原性样本
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非还原性样本
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转膜Buffer
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20 x Bis-Tris转膜Buffer 25mL
|
20 x Bis-Tris转膜Buffer 25mL
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800×稳定剂
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0.625 mL
|
0
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甲醇(自备)
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50 mL/单胶,100mL/双胶
|
50 mL/单胶,100mL/双胶
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dH2O 补足至
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500 mL
|
500 mL
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膜(自备)
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硝酸纤维素 或 PVDF
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电压、电流
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30 V. 170mA
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转膜时间
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60 min
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附2: 《蛋白电泳 凝胶选择指南表》
凝胶体系
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Bis-Tris 体系
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Tris-Glycine 体系 (Tris-甘氨酸)
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Tris-Acetate体系 (Tris-乙酸)
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Tricine体系
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蛋白分离范围
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高分辨、高清晰锐利
宽分子量范围 (2.5-300 kDa)
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经典传统
较宽分子量范围 (6-200kDa)
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高分子量
分离范围 (30-500 kDa)
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低分子量
分离范围 (2- 20 kDa)
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产品应用
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变性电泳 中性 pH 体系 适用于蛋白质免疫印迹、质谱分析,蛋白质翻译后修饰等对检测灵敏度要求高的应用
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变性或非变性电泳 经典 Laemmli 凝胶体系 常用于检测蛋白分子量,蛋白质免疫印迹、凝胶内染色、适用含去垢剂和高盐的样本
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变性或非变性电泳 中性 pH 体系 可更高效地分离、转印和分析高分子量蛋白质 用于蛋白质免疫印迹、质谱分析、蛋白质翻译后修饰.
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变性电泳 分离、转印和分析低分子量蛋白质的首选 用于蛋白质免疫印迹、凝胶内染色.
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适配 上样Buffer
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LDS样本Buffer
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Tris-甘氨酸SDS上样Buffer
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LDS样本Buffer
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Tricine SDS样本Buffer
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Tris-甘氨酸上样Buffer
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Tris-甘氨酸上样Buffer
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适配 电泳Buffer
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MOPS 电泳Buffer
适用中高分子量蛋白分离
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Tris-甘氨酸SDS电泳Buffer
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Tris-乙酸电泳Buffer
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Tricine SDS电泳阳极Buffer
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MES 电泳Buffer
适用低分子量蛋白分离
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Tris-甘氨酸电泳Buffer
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Tris-甘氨酸电泳Buffer
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Tricine SDS电泳阴极Buffer
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适配 转膜Buffer
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Bis-Tris转膜Buffer
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Tris-甘氨酸 转膜Buffer
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Bis-Tris转膜Buffer
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Tris-甘氨酸转膜Buffer
或Bis-Tris转膜Buffer(蛋白测序用)或0.5 x TBE
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稳定剂
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+
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-
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+/-
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-
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