1、 准备工作:
a.、裂解液溶解后混匀并置于冰浴上备用。
b、裂解液工作液的准备:使用前每50μL 裂解液加入0.5μL DTT
c、2×反应液溶解后混匀并置于冰浴上备用
2、 样品的处理
a、对于悬浮细胞
把没有诱导凋亡的对照样品和诱导凋亡的样品,离心(2000rpm,5min)收集细胞,小心吸除上清,
同时确保尽量没有细胞被吸除,PBS洗涤一次。同前吸尽上清后,按照每200万细胞加入50微升裂解液的比例加入裂解液,重悬沉淀,冰浴裂解30min,其间涡旋振荡3~4次,每次10 s;或冻融2~3次。下转第3步进行实验。
b、对于贴壁细胞
按常规的方法用胰酶消化贴壁细胞,并收集细胞。用PBS洗涤一次,吸尽上清后,按照每200万细胞加入50微升裂解液的比例加入裂解液,重悬沉淀,冰浴裂解30min,其间涡旋振荡3~4次,每次10 s;或冻融2~3次。下转第3步进行实验。
c、对于组织样品
每50mg固体组织置于培养皿中,手术剪剪碎成3mm×3mm左右的小块,加入50μL 冰冷裂解液工作液,在冰浴上用玻璃匀浆器匀浆。然后把匀浆液转移到1.5ml离心管中,冰浴再裂解5分钟。下转第3步进行实验。
3、 4℃ 离心(12,000rpm, 10~15min)。
4、 小心吸取上清(含裂解的蛋白质)转移至新的管中,并放置冰上待用。
5、 立即测定Caspase 9的酶活性或-70℃保存样品,同时可以取少量样品用Bradford法测定蛋白浓度。如果细胞较小,可以适当增加细胞的用量。
6、 Caspase 9酶活性的检测:
a、取出适量的Ac-LEHD-pNA 和2×反应液,置于冰浴上备用。
b、使用前每50μL 2×反应液加入0.5μL DTT。
c、吸取50μL含100~200μg蛋白的细胞或组织裂解上清;如体积不足50μL用裂解液补足至总体积50μL(各组均采用同样的蛋白量进行测定和比较)。
d、如下设置反应体系:
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空白对照
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样品
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2×反应液
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50μL
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50μL
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裂解液
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50μL
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0μL
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待测样品
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0μL
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50μL
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Ac-LEHD-pNA
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5μL
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5μL
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总体积
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105μL
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105μL
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e、加入Ac-LEHD-pNA后混匀,注意避免在混匀时产生气泡。37℃孵育4hr。发现颜色变化比较明显时即可测定A405。如果颜色变化不明显,可以适当延长孵育时间,甚至可以孵育过夜。
f、用酶标仪或分光光度计(100μL的比色皿)在λ=405nm或400nm测定其吸光值。
g、通过计算OD诱导剂/OD阴性对照的倍数来确定凋亡诱导剂组Caspase-9 活化程度。
7、 参考Chemicon公司的Caspase 9酶活力单位的定义:One unit is the amount of enzyme that will cleave 1.0 nmol of the colorimetric substrate Ac-LEHD-pNA per hour at 37℃ under saturated substrate concentrations。即一个酶活力单位定义为当底物饱和时,在37℃可以剪切1nmol Ac-LEHD-pNA 产生1nmol pNA的Caspase 9的酶量。这样就可以计算出样品中含有多少个酶活力单位的Caspase 9。说明:在本试剂盒的检测体系中,底物的起始浓度为0.2mM,此时底物是饱和的,对于许多样品而言在37℃孵育4个小时以内底物都是饱和的;对于样品中Caspase 9酶活力特别高的情况,须用裂解液适当稀释样品后再进行测定。